Sabtu, 13 Januari 2018

Caracteriztic of Bacillus subtillis

Jual Culture Bakteri Bacillus subtilis

Bacillus subtilis, known also as the hay bacillus or grass bacillus, is a Gram-positive, catalase-positive bacterium, found in soil and the gastrointestinal tract of ruminants and humans. A member of the genus Bacillus, B. subtilis is rod-shaped, and can form a tough, protective endospore, allowing it to tolerate extreme environmental conditions. B. subtilis has historically been classified as an obligate aerobe, though evidence exists that it is a facultative anaerobe. B. subtilis is considered the best studied Gram-positive bacterium and a model organism to study bacterial chromosome replication and cell differentiation. It is one of the bacterial champions in secreted enzyme production and used on an industrial scale by biotechnology companies.
Bacillus subtilis is a Gram-positive bacterium, rod-shaped and catalase-positive. It was originally named Vibrio subtilis by Christian Gottfried Ehrenberg,[3] and renamed Bacillus subtilis by Ferdinand Cohn in 1872 (subtilis being the Latin for 'fine'). B. subtilis cells are typically rod-shaped, and are about 4-10 micrometers (μm) long and 0.25–1.0 μm in diameter, with a cell volume of about 4.6 fL at stationary phase.[5] As with other members of the genus Bacillus, it can form an endospore, to survive extreme environmental conditions of temperature and desiccation. B. subtilis is a facultative anaerobe and had been considered as an obligate aerobe until 1998. B. subtilis is heavily flagellated, which gives it the ability to move quickly in liquids. B. subtilis has proven highly amenable to genetic manipulation, and has become widely adopted as a model organism for laboratory studies, especially of sporulation, which is a simplified example of cellular differentiation. In terms of popularity as a laboratory model organism, B. subtilis is often considered as the Gram-positive equivalent of Escherichia coli, an extensively studied Gram-negative bacterium.[citation needed.

This species is commonly found in the upper layers of the soil, and evidence exists that B. subtilis is a normal gut commensal in humans. A 2009 study compared the density of spores found in soil (about 106 spores per gram) to that found in human feces (about 104 spores per gram). The number of spores found in the human gut was too high to be attributed solely to consumption through food contamination.[8] B. subtilis has been linked to grow in higher elevations and act as an identifier for both eco-adaptability and honey bee health.

The Usage of Aspergillus oryzae And Aspergillus sojae

Jual Culture Aspergillus oryzae, Aspergillus sojae
Telp. 087731375234

Aspergillus oryzae and Aspergillus sojae strains used for shoyu production have focused on comparing these two fungal species and improving their enzyme-producing abilities. A study of the enzymatic differences between 11 strains of A. oryzae and 20 strains of A. sojae showed that the activities of neutral, acid, and alkaline proteases, xylanase, pectin lyase, phosphatase, and aminopeptidase were not significantly different. However, acid carboxypeptidase activity and α-amylase activity were higher from A. oryzae when compared with A. sojae strains, while endopolygalacturonidase activity was much higher from A. sojae than from A. oryzae (Terada et al., 1980). The ratios between α-amylase activity and endopolygalacturonidase activity of 0.5–2 for A. sojae and 20–2000 for A. oryzae were suggested as a differentiation criterion for the species (Terada et al., 1980). Hayashi et al. (1981) compared the performance of these two fungi in shoyu production. They found that the activities of protease, acetic carboxypeptidase, and α-amylase were lower and those of endopolyglueuronidase and glutaminase were higher in koji made with A. sojae. In the moromi stage, the proportions of NH3 nitrogen (N), glutamic acid N, and total Ν were higher, and viscosity and heat residue were lower with A. sojae. The resulting concentrations of citric and succinic acids in the shoyu were significantly higher (p < 0.001) with A. sojae than with A. oryzae. Ishihara et al. (1996) compared the volatile components in commercial koikuchi shoyus from different factories using either A. oryzae or A. sojae and found that the concentrations of 1- and 2-propanol, furfuryl and benzyl alcohols, ethyl-benzoate, and lactate, acetate, pyrazines, carbonyl compounds such as ethanal, maltol, and phenyl acetaldehyde, phenol, and others, were higher in the shoyu from factories using the latter fungus, but concentrations of 2-methyl- and 3-methyl − 1-butanol, 2-phenyl ethanol, 2-methyl- and 3-methyl-butanoic acid, 3-methylthio − 1-propanol, HEMF, 4-ethyl guaiacol, 4-ethyl phenol, and others were greater in shoyu from factories using the former fungus. These results have prompted factory managements to use A. sojae for koji production.
Using an unusual system, Yasui et al. (1982) tested a range of koji fungal strains for glutaminase production and found that, when a strain showing 16% higher glutaminase activity than its parent strain was compared with its parent in the production of shoyu, the final glutamic acid concentration was 10% higher.
In the early 1950s, A. sojae KS was irradiated with X-rays by Iguchi to produce strain X-816 of A. sojae (Sekine et al., 1970). Sekine et al. (1970) obtained seven strains with superior alkaline phosphatase activity (130–190%) and highly active protease, peptidase, cellulase, and amylase activities that were better at decomposing soybean protein. Yokoyama and Kadowaki (1983) UV-irradiated A. sojae strain Η and obtained mutant strains with total protease activities 2.5 times that in wheat bran and soy sauce kojis. The mutant strains were diploidized and combined with natural mutants from Μ strains, and strains TH and D-15 were produced that possessed higher total protease activities than the Μ strains, and grew well. However, UV irradiation may stimulate the production of toxic elements in otherwise safe fungi. Kalayanamitr et al. (1987) UV-irradiated A. flavus var. columnaris Raper and Fennel (ATCC44310) to obtain mutant strains with high protease and amylase activities, and light-colored conidia. Some selected mutant strains were found to be acutely toxic to weanling rats, even though they were negative for aflatoxin production. The investigators suggested that the toxic compound could be one of four substances: maltorhyzine, aspergillic acid, kojic acid, or cycoopiazonic acid.
Furuya et al. (1983) fused, with an efficiency of 1%, protoplasts derived from two strains of A. oryzae, one with a high growth rate and the other producing high levels of protease. Two strains derived from successful fusions showed high stability, fast growth, and abundant sporulation and produced 2.3 times more protease than the parent fast-growth strain.
The growth and development of microorganisms on defatted soybean and ground wheat koji prepared with A. sojae were studied by electron microscopy by Kitahara et al. (1980). Growth of the mold on the surface of the soybean was rapid up to 24 h, at which point formation of sporing bodies began, and spores were released within 40 h. However, very little fungal growth was seen on the wheat surface, but yeasts were seen growing on the wheat. Growth of Micrococcus species became noticeable after 16 h, as did multiplication of lactobacilli. These observations on the growth of the koji mold are at odds with the observation that 10–20% of the dry matter in koji is lost in the koji stage (Takeuchi et al., 1968) and the observations below on the significant consumption of carbohydrate during the koji stage. I suggest that significant penetration of the wheat endosperm should have been seen.
During koji production, carbohydrate is consumed by the fungus, thus leaving less carbohydrate available to provide flavor compounds for the final shoyu produced (Furuya et al., 1985). This carbohydrate consumption is positively correlated with α-amylase activity in koji culture. To overcome the depletion of carbohydrate before the moromi stage, Furuya et al. (1985) derived mutants that utilized 10–50% less carbohydrate during preparation of koji than the parent strain, with about 1/3, 1/20, and 1/150 of the α-amylase activity of the parent strain of A. oryzae. Significantly increased amounts of carbohydrate-derived compounds were found in the resulting shoyu made with these mutants.
Enhanced glutaminase activity in koji is desirable to increase glutamic acid production in soy sauce, and reduced conidial production in the koji reduces contamination of the air with floating conidia (Ueki et al., 1994a). A mixed tane koji of two koji fungi, A. oryzae strains K2 and HG, increased glutaminase activity of the mixture to 11.3 units · g− 1 dry koji, which was higher than the 4.7 or 4.4 units · g− 1 dry koji produced by the K2 strain or HG strain, respectively, and conidia production was reduced tenfold (Ueki et al., 1994a). The mixed tane koji was used in the manufacture of soy sauce, and the resulting mixed koji made with 3.6 tons of defatted soybean and of wheat grain showed high glutaminase activity (5.5 units · g− 1 dry weight koji) when compared to strain K2 alone (1.8 units · g− 1 dry weight koji). In addition, the number of conidia in the mixed culture was 2.5 × 107 g− 1 dry koji, which was lower than 1.3 × 108 g− 1dry koji produced by strain K2 alone. The glutamic acid content of the raw soy sauce was 1.25 times higher than the glutamic acid level found in normal soy sauce (Ueki et al., 1994b).
Kim and Cho (1975) investigated soy sauce production in Korea using a soy–wheat koji prepared with A. sojae, using natto, a soy bean product prepared with Bacillus natto, and using a mixture of the two in varying proportions. The natto–brine mixture had protease activity twice as high as the koji alone, and this was reflected in the protease activities found in mixtures of the natto and koji. On comparing the organoleptic qualities of soy sauces fermented for 3 months, the koji:natto at a ratio of 6:4 had the best flavor, followed by koji alone.

Sabtu, 06 Januari 2018

Jual Media MRS Agar Dan MRS Broth

MRS is a selective culture medium designed to favour the luxuriant growth of Lactobacilli for lab study. Developed in 1960, this medium was named for its inventors. It contains sodium acetate, which suppresses the growth of many competing bacteria (although some other Lactobacillales, like Leuconostoc and Pediococcus, may grow). This medium has a clear brown colour

Jual Media Mikroba PDA ( Potato Dextrose Agar)

Potato dextrose agar merupakan salah satu media yang baik digunakan untuk membiakkan suatu mikroorganisme, baik itu berupa cendawan/fungsi, bakteri, maupun sel mahluk hidup. Media PDA merupakan jenis media biakan dan memiliki bentuk/ konsistensi padat (solid). Potato dextrose agar merupakan paduan yang sesuai untuk menumbuhkan biakan (Winda, 2009).
Media potato dextrose agar (PDA) berfungsi sebagai media kapang (jamur) dan khamir. Selain itu PDA digunakan untuk enumerasi yeast dan kapang dalam suatu sampel atau produk makanan. PDA mengandung sumber karbohidrat dalam jumlah cukup yaitu terdiri dari 20% ekstrak kentang dan 2% glukosa sehingga baik untuk pertumbuhan kapang dan khamir tetapi kurang baik untuk pertumbuhan bakteri. Komposisinya PDA berupa kentang (4 g/L (berasal dari 200 gr kentang)), dektrose (15 g/L) dan aquades 1L.
Secara lebih rinci karakteristik media PDA terdiri dari :
Komposisi Media PDA (Potato Dextrose Agar)
Potato extract  : 40,0 gram
Dextrose           : 20,0 gram
Agar                 : 15,0 gram
Fungsi dari Komposisi Media PDA (Potato Dextrose Agar)
Potato extract: Potato extract atau ekstrak kentang merupakan sumber karbohidrat atau makanan bagi biakan pada media PDA (Potato Dextrose Agar). Dextrose: Dextrose atau gugusan gula baik itu monosakarida maupun polisakarida merupakan penambah nutrisi bagi biakan pada media PDA (Potato Dextrose Agar).  Agar: Agar merupakan bahan media/tempat tumbuh bagi biakan yang baik, karena mengandung cukup air.
Fungsi Media PDA (Potato Dextrose Agar) di Mikrobiologi

Dalam mikrobiologi media PDA (Potato Dextrose Agar) digunakan untuk menumbuhkan atau mengidentifikasi yeast dan kapang. Dapat juga digunakan untuk enumerasi yeast dan kapang dalam suatu sampel atau produk makanan. PDA mengandung sumber karbohidrat dalam jumlah cukup yaitu terdiri dari 20% ekstrak kentang dan 2% glukosa sehingga baik untuk pertumbuhan kapang dan khamir tetapi kurang baik untuk pertumbuhan bakteri.

Trichoderma viride

Jual Culture Trichoderma viride
Telp. 087731375234

1. Morfologi
Trichoderma virede adalah salah satu jenis fungi yang banyak dikenal sebagai biopestisida. Trichoderma virede berwarna putih, kuning, hijau muda, dan hijau tua. Trichoderma viride pada skala laboratorium berwarna hijau, hal ini disebabkan oleh adanya kumpulan konidia pada ujung hifa kapang tersebut. Susunan sel kapang Trichoderma bersel banyak berderet membentuk benang halus yang disebut dengan hifa. Hifa pada jamur ini berbentuk pipih, bersekat, dan bercabang-cabang membentuk anyaman yang disebut miselium. Miseliumnya dapat tumbuh dengan cepat dan dapat memproduksi berjuta-juta spora, karena sifatnya inilahTrichoderma dikatakan memiliki daya kompetitif yang tinggi. Dalam pertumbuhannya, bagian permukaan akan terlihat putih bersih, dan bermiselium kusam. Setelah dewasa, miselium memiliki warna hijau kekuningan.
Kapang ini memiliki bagian yang khas antara lain miselium berseptat, bercabang banyak, konidia spora berseptat dan cabang yang paling ujung berfungsi sebagai sterigma. Konidiofornya bercabang berbentuk verticillate. Pada bagian ujung konidiofornya tumbuh sel yang bentuknya menyerupai botol (fialida), sel ini dapat berbentuk tunggal maupun berkelompok. Konidianya berwarna hijau cerah bergerombol membentuk menjadi seperti bola dan berkas-berkas hifa terlihat menonjol jelas diantara konidia spora. Trichodermaberkembangbiak secara aseksual dengan membentuk spora di ujung fialida atau cabang dari hifa.
2. Fisiologi
Trichoderma adalah salah satu jamur tanah yang tersebar luas (kosmopolitan), yang hampir dapat ditemui di lahan-lahan pertanian dan perkebunan. Trichoderma bersifat saprofit pada tanah, kayu, dan beberapa jenis bersifat parasit pada jamur lain. Trichoderma viride merupakan jenis yang paling banyak dijumpai diantara genusnya dan mempunyai kelimpahan yang tinggi pada tanah dan bahan yang mengalami dekomposisi.
Pada spesies saprofit, kapang tumbuh pada kisaran suhu optimal 22-30°C. Sedangkan menurut Enari (1983), suhu optimal untuk pertumbuhan kapang ini adalah 32-35°C dan pH optimal sekitar 4.0.
Trichoderma viride adalah salah satu jenis jamur yang bersifat selulolitik karena dapat menghasilkan selulase. Banyak kapang yang bersifat selulolitik tetapi tidak banyak yang menghasilkan enzim selulase yang cukup banyak untuk dapat dipakai secara langsung tanpa sel bagi usaha dalam skala besar. Kapang selulolitik yang cukup baik memproduksi enzim selulolitik adalah Trichoderma viride. Trichoderma viride bisa juga dikatakan sebagaimikroorganisme yang mampu menghancurkan selulosa tingkat tinggi dan memiliki kemampuan mensintesis beberapa faktor esensial untuk melarutkan bagian selulosa yang terikat kuat dengan ikatan hidrogen. Ada juga yang mengatakan bahwa Trichoderma viridemerupakan jamur yang potensial memproduksi selulase dalam jumlah yang relatif banyak untuk mendegradasi selulosa. Trichoderma viride merupakan kelompok jamur selulolitik yang dapat menguraikan glukosa dengan menghasilkan enzim kompleks selulase. Enzim ini berfungsi sebagai agen pengurai yang spesifik untuk menghidrolisis ikatan kimia dari selulosa dan turunannya. Trichoderma viride dan Trichoderma reesei merupakan kelompok jamur tanah sebagai penghasil selulase yang paling efisien. Enzim selulase yang dihasilkanTrichoderma viride mempunyai kemampuan dapat memecah selulosa menjadi glukosa sehingga mudah dicerna oleh ternak. Selain itu Trichoderma viride mempunyai kemampuan meningkatkan protein bahan pakan dan pada bahan berselulosa dapat merangsang dikeluarkannya enzim selulase.
Keuntungan jamur tersebut sebagai sumber selulase adalah menghasilkan selulase lengkap dengan semua komponen-komponen yang dibutuhkan untuk hidrolisis total selulosa kristal dan protein selulosa yang dihasilkan cukup tinggi. Miselium Trichoderma dapat menghasilkan suatu enzim yang bermacam-macam, termasuk enzim selulase (pendegradasi selulosa) dan kitinase (pendegradsi kitin). Oleh karena adanya enzim selulase, Trichoderma dapat tumbuh secara langsung di atas kayu yang terdiri atas selulosa sebagai polimer dari glukosa. Oleh karena adanya kitinase, Trichoderma dapat bersifat sebagai parasit bagi jamur yang lainnya. Secara alami seseorang dapat sering menemukan Trichoderma yang menjadi parasit pada badan buah dan miselia dari jamur yang lain, seperti badan buah dari Hydnochaete.
Trichoderma viride adalah penghasil enzim selulolitik yang sangat efisien, terutama enzim yang mampu menghidrolisis kristal selulosa. Trichoderma viride banyak digunakan dalam penelitian karena memiliki beberapa keuntungan, dinataranya adalah :
1. Selulase yang diperoleh mengandung semua komponen-komponen yang diperlukan untuk proses hidrolisis seluruh kristal selulosa.
2. Protein selulase dihasilkan dalam kualitas sangat tinggi.
Selain mempunyai keuntungan, Trichoderma viride juga memiliki kerugian, yaitu:
1. Tidak dapat mendegradasi lignin.
2. Selulase yang dihasilkan mempunyai aktivitas spesifik yang rendah.
3. β–glukosidase yang dihasilkan mempunyai level yang rendah.
Selulase yang dihasilkan oleh Trichoderma viride mengandung komponen terbesar berupa selobiase dan β-1,4-glukan-selobiohidrolase (C1), sementara β-1,4-glukan-selobiohidrolase (Cx) terdapat dalam jumlah kecil. Selulase yang diproduksi mengandung asam-asam amino tertentu, yaitu :
1. Golongan asam amino yang bersifat asam : aspartat dan glutamat.
2. Golongan asam amino polar : serin, treonin, dan glisin.
3. Sebagian kecil asam amino dasar.
4. Sebagian kecil golongan asam amino sulfur.
Semua enzim ini bersifat hidrolitik dan bekerja baik secara berturut-turut atau bersamaan. Selobiohidrolase adalah enzim yang mempunyai afinitas terhadap selulosa tingkat tinggi yang mampu memecah selulosa kristal. Sedangkan endoglukanase bekerja pada selulosa amorf. Selanjutnya dijelaskan selobiohidrolase memecah selulosa melalui pemotongan ikatan hidrogen yang menyebabkan rantai-rantai glokosa mudah untuk dihidrolisis lebih lanjut. Hidrolisa selanjutnya berlangsung sehingga diperoleh selobiosa dan akhirnya glukosa dilakukan oleh enzim β–glukonase dan β–glukosidase.
3. Ekologi
Trichoderma spp. dapat ditemui di hampir semua jenis tanah dan pada berbagai habitat. Jamur ini dapat berkembang biak dengan cepat pada daerah perakaran. Di samping itu Trichoderma spp. merupakan jamur parasit yang dapat menyerang dan mengambil nutrisi dari jamur lain. PerananTrichoderma spp. yang mampu menyerang jamur lain namun sekaligus berkembang baik pada daerah perakaran menjadikan keberadaan jamur ini dapat berperan sebagai biocontrol dan memperbaiki pertumbuhan tanaman. Beberapa speciesTrichoderma seperti T. harzianum, T. viride dan T. album, telah diteliti peranannya sebagai bio-controlA.nidulans termasuk dalam jenis Aspergillusdan mampu berkembang biak dengan cepat dalam membentuk filamen-filamen jamur baik dalam media cair maupun media padat dan pada berbagai kandungan nutrisi (Setyowati, dkk, 2003). Aspergillus dapat ditemukan pada tanah, sampah dan di udara.Aspergillus dapat menyebabkan infeksi, alergi atau keracunan baik pada tumbuhan, hewan maupun manusia (Setyowati, dkk, 2003).
4. Taksonomi
Klasifikasi kapang Trichoderma viride adalah sebagai berikut ini :
Kingdom Fungi
Divisio Amastigomycota
Subdiviso Deuteromycotina
Classis Deuteromycetes
Ordo Moniliales
Family Moniliaceae
Genus Trichoderma
Species Trichoderma viride
5. Peranan dalam Lingkungan
Trichoderma adalah jamur penghuni tanah yang dapat diisolasi dari perakaran tanaman lapangan. Spesies Trichoderma disamping sebagai organisme pengurai, dapat pula berfungsi sebagai agen hayati dan stimulator pertumbuhan tanaman. Beberapa spesiesTrichoderma telah dilaporkan sebagai agensia hayati adalah T. HarzianumT. Viridae, dan T.Konigii yang berspektrum luas pada berbagai tanaman pertanian. Biakan jamurTrichoderma dalam media aplikatif seperti dedak dapat diberikan ke areal pertanaman dan berlaku sebagai biodekomposer, yaitu dapat mendekomposisi limbah organik (rontokan dedaunan dan ranting tua) menjadi kompos yang bermutu. Selain itu, Trichoderma dapat juga digunakan sebagai biofungisida, dimana Trichoderma mempunyai kemampuan untuk dapat menghambat pertumbuhan beberapa jamur penyebab penyakit pada tanaman antara lain Rigidiforus lignosusFusarium oxysporumRizoctonia solaniSclerotium rolfsii, dll.
Saat ini, Trichoderma merupakan salah satu mikroorganisme fungsional yang dikenal luas sebagai pupuk biologis tanah. Pupuk biologis Trichoderma dapat dibuat dengan inokulasi biakan murni pada media aplikatif, misalnya dedak. Sedangkan biakan murni dapat dibuat melalui isolasi dari perakaran tanaman, serta dapat diperbanyak dan diremajakan kembali pada media PDA (Potato Dextrose Agar).
Trichoderma sering kali menjadi masalah tertentu di dalam industri penanaman jamur, di mana Trichoderma dapat menjadi parasit pada miselium dan badan buah dari jamur lain. Ketika jamur lain menjadi inang parasit Trichoderma, kemudian berkembang sangat cepat di permukaan membentuk koloni yang berwarna hijau, sehingga membuat jamur menjadi buruk dan mengubah bentuk jamur lain.
Kapang Trichoderma viride juga digunakan untuk meningkatkan nilai manfaat jerami padi melalui fermentasi, karena jamur ini mempunyai sifat selulolitik dan mengeluarkan enzim selulase yang dapat merombak selulosa menjadi selubiosa hingga akhirnya menjadi glukosa.
Proses yang terjadi ketika jerami padi difermentasi menggunakan Trichoderma viride adalah terjadinya degradasi terhadap dinding sel yang diselaputi oleh lignin, selulosa dan hemiselulosa. Akibat degradasi ini maka sebagian lignin akan terdegradasi. Selulosa dan hemiselulosa juga akan terurai menjadi glukosa.

Niken. Mengenal Lebih Jelas Trichoderma Viride. 2009
Diakses 9 Maret 2009
N. Setyowati, H. Bustamam, M. Derita. Penurunan Penyakit Busuk Akar dan Pertumbuhan Gulma pada Tanaman Selada yang Dipupuk Mikroba. 2003
Diakses 9 Maret 2009
Organic Indonesian Vanilla. Pupuk Biologis Trichoderma. 2008
Diakses tanggal 9 Maret 2009
Diposting oleh mEY^Liadi 00.16

Cara Membuat Nata De Coco

Jual Starter Nata (Acetobacter xylinum)
Telp. 087731375234

Proses Produksi Nata De Coco

1.   Siapkan nampan yang akan digunakan dan telah disterilkan terlebih dulu dengan dijemur hingga kering. Kemudian nampan tersebut ditutup koran dan diikat dengan tali karet ban dan disusun pada rak-rak, bisa ditumpuk 5 sampai 7 nampan.
2.   Air kelapa yang akan digunakan disaring dengan menggunakan saringan untuk memisahkan kontaminan berupa material fisik.
3.   Masukan  air kelapa sebanyak 50 liter ke dalam panci.
4.   Rebus air kelapa sampai mendidih. Buang busa yang terbentuk selama pemanasan.
5.   Setelah mendidih tambahkan bahan-bahan pembantu gula pasir, ZA (ammonium sulfat food grade), dan  terakhir asam cuka pekat sampai larutan mencapai keasaman pH 3-4.
6.   Kemudian larutan tersebut dalam keadaan panas dituangkan ke dalam nampan yang telah disterilkan dan telah ditutup koran diikat tali karet ban.
7.   Setelah media air kelapa dingin (suhu kamar) kira-kira 7 jam, ditambahkan stater Acetobacter xylinum sebanyak 120 ml untuk tiap nampan yang berisi 1,2 liter larutan dan wadah ditutup kembali dengan koran. Inkubasi dilakukan selama 7-8 hari dalam ruangan yang telah dikondisikan suhu, kelembaban dan kebersihan lingkungannya. Ruang fermentasi diusahakan tertutup, kering dan tidak ada aktivitas orang lalu lalang. Pada saat inkubasi inilah terjadi proses fermentasi, yaitu terbentuknya lapisan nata dipermukaan media larutan.
8.   Setelah proses inkubasi selama 7-8 hari, kemudian dilakukan pemanenan. Ketebalan nata dapat mencapai 1-1,5 cm. Dalam kondisi normal fermentasi selama 8 hari sudah mencapai ketebalan yang dimaksud. Nata lempeng dipisahkan dari nampan ditampung sementara dengan menggunakan ember. Media yang tidak jadi atau atau berjamur dipisahkan langsung dengan menggunakan wadah yang berbeda. Cairan nata yang tidak jadi dan tercemar jamur segera dibuang jauh dari ruang fermentasi.
9.   Sortasi atau pemisahan nata berdasarkan kualitas. Sortasi dilakukan sebelum lembaran nata tersebut dimasukan dalam wadah penampungan. Jangan mencampurkan nata yang bagus dengan yang jelek. Nata yang terkontaminsasi dengan jamur, berlubang, tipis dipisahkan sendiri. Nata yang terkontaminasi jamur dapat menjalar mengkontaminasi lebih luas. Lapisan tipis yang terdapat di lembaran nata selanjutnya dibersihkan dengan cara mengerok atau menggosok dengan kertas koran.
10.                Penyimpanan nata dalam bak atau drum plastik dengan menambahkan air kurang lebih 20% volume bak atau drum plastik tersebut.  Selama penyimpanan hindari terkena cahaya matahari secara langsung, terkontaminasi dengan bahan kimia berbahaya, kekurangan air. Dan harus sering melakukan penggantian air agar nata tetap baik. Kerusakan yang sering terjadi selama penyimpanan dalam bak penampungan adalah nata berlubang, nata mudah sobek, berjamur dan berubah warna menjadi kemerahan, bau busuk dan nata hancur menjadi air kembali. Nata yang tidak terendam selama penyimpanan, pada permukaannya ditumbuhi jamur dan akan menyebabkan kebusukan.

Rabu, 03 Januari 2018

Karakteristik Dan Manfaat Aspergillus niger

Jual Culture Aspergillus niger
Telp. 087731375234

Aspergillus niger adalah adalah jenis fungi diklasikasikan genus Aspergillus bersifat aseksual, meskipun bentuk sempurna (bentuk yang bereproduksi secara seksual) telah ditemukan. Aspergillus banyak ditemukan di berbagai tempat di alam. Aspergillus niger umumnya ditemukan tumbuh sebagai saprofit pada daun mati, bahan makanan yang disimpan, tumpukan kompos, dan vegetasi yang membusuk lainnya.
Penggunaan utama dari A. niger adalah untuk produksi enzim dan asam organik dengan cara fermentasi. Aspergillus niger juga digunakan untuk menghasilkan asam organik seperti asam sitrat dan asam glukonat. Sejarah penggunaan yang aman untuk Aspergillus niger terutama berasal dari penggunaannya dalam industri makanan untuk produksi banyak enzim seperti aamylase, amiloglukosidase, selulase, laktase, invertase, pectinases, dan protease asam.

Seperti halnya jamur pada umumnya, taksonomi Aspergillus terutama didasarkan pada ciri-ciri morfologi, bukan, fitur fisiologis dan biokimia karakteristik genetik sering digunakan untuk mengklasifikasikan bakteri. Genus Aspergillus biasanya didefinisikan sebagai jamur saprophytic aseksual yang menghasilkan konidia hitam atau coklat besar dengan phialides yang diatur dalam kepala bulat memancar dari vesikel atau conidiophore bola. 
Posting Lama ►


Formula Pembuatan Tepung Mocaf

Acetobacter xylinum

Acetobacter xylinum
Bibit Nata De Coco

Copyright © 2012. AGROTEKNO LAB - All Rights Reserved Template IdTester by Blog Bamz